Determinación y cuantificación de mercurio total en tejido muscular de pargo (lutjanus colorado), mediante la técnica de vapor frío acoplado a espectrofotometría de fluorescencia atómica
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Resumen
Se determinó mercurio total en pescado pargo mediante la técnica de vapor frío acoplado a espectrofotometría de fluorescencia atómica (CV-AFS, por sus siglas en inglés). Se llevó a cabo un muestreo no probabilístico en el mercado América de la ciudad de Quito. Las muestras de pescado se sometieron a un proceso de liofilización y digestión ácida asistida por microondas. Se obtuvo valores de concentración de mercurio total de 0,077; 0,079; 0,046; 0,093 y 0,113 mg kg-1 respectivamente, cuyos coeficientes de variación fueron 5,00; 3,91; 3,01; 16,1 y 14,5 %. Para las muestras de pargo mediano se obtuvieron valores de 0,163; 0,111; 0,176; 0,201 y 0,185 mg kg-1, y sus coeficientes de variación fueron 13,3; 17,6; 8,18; 9,64 y 14,5 %. Mientras que para las muestras de pargo grande los valores obtenidos fueron: 0,160; 0,182; 0,176; 0,361 y 0,170 mg kg-1, dando coeficientes de variación de 10,6; 8,79; 16,8; 4,57 y 9,45 %. Las muestras de pargo grande presentaron un mayor contenido de mercurio en su organismo. Se determinó que las muestras de pescado contienen mercurio, sin embargo, no exceden los límites máximos permisibles establecidos por el Codex Alimentarius.
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Citas
Aranda, P. R., Gil, R. A., Moyano, S., De Vito, I., & Martinez, L. D. (2009). Slurry sampling in serum blood for mercury determination by CV-AFS. Journal of Hazardous Materials, 161(2–3), 1399–1403. https://doi.org/10.1016/j.jhazmat.2008.04.129
Bergés, T. M. E., Fernando, M. F, J., Torres, R, Y., Galván, M, F., & Páez, O, F. (2015). Mercury and selenium in tissues and stomach contents of the migratory sailfish, Istiophorus platypterus, from the Eastern Pacific: Concentration, biomagnification, and dietary intake. Marine Pollution Bulletin, 101(1), 349–358. https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2015.10.021
Chaves, R. I. (2016). Metodologías analíticas utilizadas actualmente para la determinación de mercurio en músculo de pescado. Pensamiento Actual, 16(26), 113. https://doi.org/10.15517/pa.v16i26.25187
Comisión del Codex Alimentarius. (2018). Informe de la 12a. reunión del Comité del Codex sobre Contaminantes de los Alimentos. 88. Retrieved from http://www.fao.org/fao-who-codexalimentarius/sh-proxy/en/?lnk=1&url=https%253A%252F%252Fworkspace.fao.org%252Fsites%252Fcodex%252FMeetings%252FCX-735-12%252FREPORT%252520%2528FINAL%2529%252FREP18_CFs.pdf
de Carvalho, G. G. A., Feres, M. A., Ferreira, J. R., & Kennedy, V. H. (2010). Total and inorganic mercury determination in fish tissue by flow injection cold vapour atomic fluorescence spectrometry. International Journal of Environmental Analytical Chemistry, 90(9), 686–696. https://doi.org/10.1080/03067310902871729
EPA. (2000). Fish Sampling and Analysis. Guidance for Assessing Chemical Contaminant Data for Use in Fish Advisories, 1(4305), 485.
González, E. M., Bodas, P, A., Guillén, P, J. J., Rubio, H, M. Á., Ordóñez, I, J. M., Trasobares, I, E. M., Calle, P, A. (2014). Exposición al metilmercurio en la población general; toxicocinética; diferencias según el sexo, Factores nutricionales y genéticos. Nutricion Hospitalaria, 30(5), 969–988. https://doi.org/10.3305/nh.2014.30.5.7727
Gonzalez, E. M., Bodas, P, A., Martinez, G, M. J., Trasobares, I, E. Bermejo, B. M. P., Ordonez, I, J. M., Calle, P, A. (2015). Metilmercurio: Recomendaciones existentes; métodos de análisis e interpretación de resultados; evaluación económica. Nutricion Hospitalaria, 31(1), 1–15. https://doi.org/10.3305/nh.2015.31.1.8316
Krishna, M. V. B., Ranjit, M., Karunasagar, D., & Arunachalam, J. (2005). A rapid ultrasound-assisted thiourea extraction method for the determination of inorganic and methyl mercury in biological and environmental samples by CVAAS. Talanta, 67(1), 70–80. https://doi.org/10.1016/j.talanta.2005.02.007
Moraes, P. M., Santos, F. A., Cavecci, B., Padilha, C. C. F., Vieira, J. C. S., Roldan, P. S., & Padilha, P. D. M. (2013). GFAAS determination of mercury in muscle samples of fish from Amazon, Brazil. Food Chemistry, 141(3), 2614–2617. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2013.05.008
Müller, E. I., Mesko, M. F., Moraes, D. P., Korn, M. das G. A., & Flores, É. M. M. (2014). Wet Digestion Using Microwave Heating. In Microwave-Assisted Sample Preparation for Trace Element Determination. https://doi.org/10.1016/B978-0-444-59420-4.00004-0
Ochoa, C. (2015). Muestreo no probabilístico: muestreo por conveniencia. Recuperado en: https://www.netquest.com/blog/es/blog/es/muestreo-por-conveniencia
Pohl, P., Zapata, J. I., Voges, E., Bings, N. H., & Broekaert, J. A. C. (2008). Comparison of the cold vapor generation using NaBH4 and SnCl2 as reducing agents and atomic emission spectrometry for the determination of Hg with a microstrip microwave induced argon plasma exiting from the wafer. Microchimica Acta, 161(1–2), 175–184. https://doi.org/10.1007/s00604-007-0887-8
Reyes, Y, C., Vergara, I. Torres O, E., Díaz, M, & González, E, E. (2016). Contaminación por metales pesados: implicaciones en salud, ambiente y seguridad alimentaria. Recuperado en: https://sci-hub.tf/https://dialnet.unirioja.es/servlet/articulo?codigo=6096110
Rezende, P. S., Silva, N. C., Moura, W. D., & Windmöller, C. C. (2018). Quantification and speciation of mercury in streams and rivers sediment samples from Paracatu, MG, Brazil, using a direct mercury analyzer®. Microchemical Journal, 140(April), 199–206. https://doi.org/10.1016/j.microc.2018.04.006
Segura, G. F. F., Ortega, M. L. C., & Olaya, N, C. W. (2011). Relación longitud-peso de la Cachana (Cynopotamus atratoensis) en la ciénaga Grande de Lorica, Colombia. Acta Biologica Colombiana, 16(1), 77–86.
Shah, A. Q., Kazi, T. G., Baig, J. A., Afridi, H. I., & Arain, M. B. (2012). Simultaneously determination of methyl and inorganic mercury in fish species by cold vapour generation atomic absorption spectrometry. Food Chemistry, 134(4), 2345–2349. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2012.03.109